Иммунология №2 2011

А. М. Косырева, Е. Ю. Симонова, О. В. Макарова

Лаборатория иммуноморфологии воспаления УРАМН НИИ морфологии человека РАМН (117418, Москва, ул. Цюрупы, д. 3)

Косырева Анна Михайловна — канд. биол. наук, ст. науч. сотр., тел. 8(499)128-96-82, e-mail: babushka84@list.ru.

МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ИММУННОЙ СИСТЕМЫ САМЦОВ И САМОК КРЫС ВИСТАР

Выявлены различия морфофункционального состояния иммунной системы самцов и самок крыс Вистар в норме. По сравнению с самцами у самок в тимусе показатель объемной доли коркового вещества ниже, а субкапсулярного слоя выше, в селезенке выше показатель объемной доли ПАЛМ-зоны, в сыворотке крови выше уровень эндотоксина и неоптерина и ниже содержание трансформирующего ростового фактора β, уровень продукции интерлейкина (ИЛ)-4, интерферона-γ и фактора некроза опухоли α более низкий, а ИЛ-6 — более высокий. В соответствии с фазами эстрального цикла, которые определяются уровнем эстрогенов и прогестинов, изменяется соотношение структурно-функциональных зон тимуса и селезенки самок крыс Вистар. По сравнению с фазой эструса у самок в фазу диэструса наблюдается увеличение показателя объемной доли коркового вещества тимуса и его субкапсулярной зоны, снижение объемной плотности ПАЛМ-зоны селезенки, повышение содержания кортикостерона в сыворотке крови. Самки в фазу эструса характеризуются более выраженной поляризацией иммунного ответа по Тх2-типу с повышением уровня ИЛ-4.

Ключевые слова:  половые стероиды, иммунная система, цитокины

ЛИТЕРАТУРА

1. Автандилов Г. Г. Медицинская морфометрия. — М., 1998.

2. Зайратьянц О. В., Берщанская A. M. Строение и развитие вилочковой железы // Болезни вилочковой железы / Харченко В. П., Саркисов Д. С., Ветшев П. С. и др. — М., 1998. — С. 6—46.

3. Кетлинский С. А., Симбирцев А. С. Цитокины. — СПб., 2008.

4. Косырева A. M., Хомякова Т. И., Макарова О. В. и др. Половые гистофизиологические различия иммунной системы, микробиома и уровня эндотоксина крыс Вистар // Научная конф. "Актуальные вопросы морфогенеза в норме и патологии". — М., 2010. — С. 106—108.

5. Angele M. K., Ayala A., Cioffi W. G. et al. Testosterone: the culprit for producing splenocyte depression following trauma-hemorrhage // Am. J. Physiol. — 1998. — Vol. 274. — P. 1530— 1536.

6. Angele M. K., Knoferi M. W., Ayala A. et al. Testosterone and estrogen differently effect Th1 and Th2 cytokine release following trauma-hemorrhage // Cytokine. — 2001. — Vol. 16. — P. 22— 30.

7. Angele M. K., Frantz M. C., Chaudry I. H. Gender and sex hormones influence the response to trauma and sepsis: potential therapeutic approaches // Clinics. — 2006. — Vol. 61, N 5. — P. 479—488.

8. Arruvito L., Giulianelli S., Flores А. С. et al. NK cells expressing a progesterone receptor are susceptible to progesterone-induced apoptosis // J. Immunol. — 2008. — Vol. 180. — P. 5746—5753.

9. Bamberger C. M., Else Т., Bamberger A. M. et al. Dissociative glucocorticoid activity of medroxyprogesterone acetate in normal human lymphocytes // J. Clin. Endocrinol. — 1999. — Vol. 84. — P. 4055—4061.

10. Baron R. L. Pathophysiology of septic shock and implications for therapy // Clin. Pharm. — 1998. — Vol. 12 — P. 829—845.

11. Cannon J. G., Dinarello C. A. Increased plasma interleukin-1 activity in women after ovulation // Science. — 1985. — Vol. 227, N 8. — P. 1247-1249.

12. Catania R. A., Angele M. K., Ayala A. et al. Dehydroepiandrosterone (DHEA) restores immune function following trauma-hemorrhage by a direct effect on T lymphocytes // Cytokine — 1998. — Vol. 11. — P. 443—450.

13. Gong S. L., Dong L. H., Liu G. W. Effects of corticosterone, cAMP, cGMP, Ca2+, and protein kinase C on apoptosis of mouse thymocytes induced by X-ray irradiation // Biomed. Environ. Sci. — 2008. — Vol. 21, N 2. — P. 167—172.

14. Hao S., Zhao J., Zhou J. et al. Modulation of 17beta-estradiol on the number and cytotoxicity of NK cells in vivo related to MCM and activating receptors // Int. Immunopharmacol. — 2007. — Vol. 15. — P. 1765—1775.

15. Hildebrand F., Hubbard W. J., Choudhry M. A. et al. Are the protective effects of 17beta-estradiol on splenic macrophages and splenocytes after trauma-hemorrhage mediated via estrogen receptor ER-alpha or ER-beta? // J. Leukoc. Biol. — 2006. — Vol. 79, N 6. — P. 1173—1180.

16. Klein S. L., Roberts C. W. Sex Hormones and Immunity to Infection. — Heidelberg, 2010.

17. Kohen F., Abel L., Sharp A. et al. Estrogen receptor expression and function in thymocytes in relation to gender and age // Dev. Immunol. — 1998. — Vol. 5. — P. 277—285.

18. Martin A., Casares F., Alonso L. et al. Changes in the blood thymus barrier of adult rats after estradiol treatment // Immunobiol. — 1995. — Vol. 192. — P. 231—248.

19. Mayr S., Walz C. R., Angele P. et al. Castration prevents suppression of MHC class II expression on macrophages after trauma-hemorrhage // J. Appl. Physiol. — 2006. — Vol. 101, N 2. — P. 448—453.

20. Pejcic-Karapetrovic B., Kosec D., Leposavic G. Differential effects of male and female gonadal hormones on the intrathymic T cell maturation // Dev. Immunol. — 2001. — Vol. 8. — P. 305—317.

21. Phiel K. L., Henderson R. A., Adelman S. J., Elloso M. M. Differential estrogen receptor gene expression in human peripheral blood mononuclear cell populations // Immunol. Lett. — 2005. — Vol. 97. — P. 107—113.

22. Spellberg B., Edwards J. E. Jr. Type 1/Type 2 immunity in infectious diseases // Clin. Infect. Dis. — 2001. — Vol. 32, N 1. — P. 76—102.

23. Tasdelen F. N., Aliyazicioglu Y., Tanyel E. et al. The value of neopterin and procalcitonin in patients with sepsis // South. Med. J. — 2010. — Vol. 103, N 3. — P. 216—219.

24. Viselli S. M., Olsen N. J., Shults K. et al. Immunochemical and flow cytometric analysis of androgen receptor expression in thymocytes // Mol. Cell. Endocrinol. — 1995. — Vol. 109. — P. 19—26.